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As técnicas de incubação de ostras

as incubadoras de ostras fornecem ostras juvenis para produção comercial, projectos de restauração e investigação. As técnicas de criação de ostras estão bem estabelecidas e muitas publicações descrevem como produzir ostras (ver Leitura Adicional). Esta publicação cobre os fundamentos da produção de incubatórios de ostras com base em informações de publicações anteriores e na nossa própria experiência. A informação é geralmente aplicável às ostras do género Crassostrea e é mais aplicável à Ostra Oriental Crassostrea virginica, nas águas meridionais.

Selecção do local

grandes tanques de retenção para liquidação e reservas de água.

há muitos elementos críticos para um incubatório de ostras, mas nenhum é mais importante do que a localização, ou mais especificamente, a localização relativa ao abastecimento de água. As incubadoras de ostras requerem grandes volumes de água do mar limpa, com salinidades na faixa de 15 a 30 partes por mil (ppt). A salinidade não é um problema importante em muitas áreas, mas alguns estuários têm episódios periódicos de entradas de água doce que podem reduzir a salinidade abaixo de 10 ppt. A água de baixa salinidade não é propícia à desova, ao desenvolvimento larvar ou ao crescimento precoce de ostras jovens. Turbidez, poluentes potenciais, desenvolvimento de bacias hidrográficas, tráfego de barcos e produção de algas naturais são outros aspectos da qualidade da água a considerar. A agência local que supervisiona as zonas de colheita de ostras deve ser consultada no que respeita aos regulamentos que possam afectar a utilização de ostras produzidas a partir do local de incubação proposto.

instalação de incubação

catenária e linhas aéreas.

incubadoras de ostras variam em tamanho e forma, dependendo dos orçamentos e da produção projetada. A maioria das instalações tem uma estação de bombagem separada que traz água salgada de uma fonte próxima ao incubatório. Ter linhas de água dupla e bombas fornece um sistema de backup e também pode reduzir a incrustação de linhas, porque uma linha pode ser permitida a ir anóxica enquanto a outra está em uso. As bombas e linhas de água são dimensionadas para a distância, altura (cabeça) e volume de água a ser movido. Sistemas que podem fornecer 10 a 25 galões (38 a 95 L) por minuto simultaneamente a partir de múltiplas saídas irá eficientemente encher uma série de grandes tanques e garantir um fluxo adequado para o cultivo de ostras.Antes de entrar no incubatório, a água é frequentemente bombeada para grandes tanques de retenção (Fig.1) onde a decantação reduz a turbidez. Ou, os tanques de retenção podem ser contornados e a água bombeada diretamente para o incubatório. Catenárias (Fig. 2) manter o espaço mais limpo e permitir que os tanques sejam enchidos diretamente.

pequeno cartucho e sistema de filtro de esterilização ultravioleta para o tratamento da água do mar.

a canalização é projetada com um sistema de filtração e tratamento de água consistindo de alguma combinação de filtros de areia rápida, filtros de cartucho, carbono ativado, esterilização ultravioleta (UV) ou pasteurização (Fig. 3). A água do mar tratada é então adequada para a produção de larvas e algas.os tanques para a produção de larvas são circulares, geralmente 250 galões (946 L) ou maiores, e têm Drenos centrais e fundo inclinado ou cônico. Os tubos de drenagem tornam conveniente drenar água e peneirar larvas. Um sistema de drenagem no chão (Fig. 4) que pode lidar com o fluxo máximo de água esperado ajuda a manter a água fora do chão.tanques rectangulares rasos com tubos de drenagem fornecem espaço para ostras juvenis. O arejamento em todo o incubatório é fornecido por um ventilador de tamanho apropriado, tubulação de PVC, tubagem de vinil e pedras de ar de boa qualidade.se as culturas de algas forem produzidas, deve haver uma sala limpa com iluminação especial para as culturas iniciais. Outro espaço maior com iluminação especial, separado do incubatório principal, é necessário para crescer maiores volumes de algas.

dreno de água no piso e tanques de viveiro.

Biologia das Ostras

uma incubadora de ostras simplesmente cria um ambiente controlado para as primeiras porções do ciclo de vida das Ostras. Por conseguinte, os produtores têm de compreender a biologia das Ostras. Ostras ocorrem naturalmente em densas agregações, muitas vezes chamados recifes ou camas. As ostras prosperam em águas estuarinas com salinidades de cerca de 10 a 25 ppt, embora possam tolerar salinidades cada vez mais baixas. Ostras em recifes naturais são estimuladas a desovar quando a temperatura da água sobe na primavera. A libertação de esperma e óvulos na água estimula ainda mais outras ostras a desovar. Isto resulta numa libertação em massa de produtos reprodutivos.

ciclo de vida da ostra Oriental, Crassostrea virginica.o esperma fertiliza os ovos na coluna de água. Ovos fertilizados desenvolvem e progridem através de uma série de estágios larvares livres (Fig. 5.) durante um período de 14 a 20 dias, dependendo da temperatura da água. Estes estágios são referidos como o trochóforo, veliger e pediveliger. As larvas trochóforas alimentam-se de algas muito pequenas enquanto se movem através da coluna de água. As larvas trochóforas rapidamente se desenvolvem em larvas veliger mais móveis (Fig. 6). No final do ciclo larval, pediveligers (Fig. 7) desenvolver um pé que os ajude a encontrar um substrato duro adequado sobre o qual se ligar (set) e se transformar em pequenas ostras. Este estágio também é chamado de “larvas de olhos” por causa do desenvolvimento de uma mancha de olho pigmentado.

Veliger larva.

pediveligers de olhos assentam fora da coluna de água quando eles são aproximadamente 300 micrômetros (?m) e podem ser estimulados a assentar pela presença de ostras adultas. Encontrar um substrato duro (cultch) é essencial para a sua sobrevivência. As larvas de olhos podem mover-se apenas a distâncias muito pequenas, uma vez que se estabelecem, a fim de encontrar um local adequado. Uma vez instalados, eles se ligam e se transformam em pequenas ostras chamadas spat. Spat logo começa a se alimentar de algas, filtrando água através de suas guelras e uma estrutura especial (palps labiais) localizado apenas na frente da boca.estes são os procedimentos básicos para a desova de ostras, a criação e fixação de larvas e a cultura de espátulas. Não há dois incubatórios funcionando de forma idêntica ou no mesmo ambiente e não há substituto para a experiência.

larva Pediveliger.a boa qualidade da água é essencial para o sucesso da produção do incubatório (ver seleção do local), mas mesmo a água de alta qualidade deve ser tratada para remover organismos indesejados. A água usada para desova, mistura de ovos e esperma, e larvas em crescimento é tipicamente filtrada mecanicamente e tratada com radiação ultravioleta. As operações em grande escala e as instalações “de baixa tecnologia” ou “quintal” podem prescindir do tratamento UV, mas utilizarão alguma filtração mecânica. A filtração mecânica é geralmente feita com um filtro de areia pressurizado, filtros de cartucho para volumes menores, ou sacos de malha fina. Por causa da rica variedade de organismos nas águas do Golfo do México, a filtração mecânica desceu para 1 ?m com tratamento UV pode ajudar no sucesso da desova e produção larvar.

a desova

a desova das Ostras é o primeiro passo na produção de spat. Em geral, dez fêmeas produzem cerca de 200 milhões de ovos. Em boas condições, 200 milhões de ovos podem resultar em 100 milhões ou mais de larvas precoces, que requerem 2.600 galões (10.000 L) de água tratada. A mortalidade Natural e a necessidade de reduzir as larvas para densidades adequadas devem deixar cerca de 25 milhões de larvas de olhos prontas para serem colocadas. Aproximadamente 10 milhões de espátulas podem ser esperadas a partir dos 25 milhões de larvas de olhos.a desova é tipicamente realizada na primavera quando as temperaturas da água sobem acima de 77 ° F (25 ° C) nas águas do Sul. O processo inicia-se com a selecção dos reprodutores, que podem ser ostras retiradas do meio selvagem ou ostras criadas e mantidas em condições controladas para reprodução selectiva. Em qualquer dos casos, são seleccionadas ostras com mais de 76 mm, embora os machos possam ser mais pequenos, sendo então examinada uma amostra para detecção da preparação reprodutiva. O pessoal experiente do incubatório pode julgar o estado de “amadurecimento” removendo a concha direita ou superior e observando o desenvolvimento das gónadas. As gónadas maduras têm muitos túbulos ramificados ou canais genitais proeminentes. As gónadas também podem ser cortadas e raspadas e o material examinado ao microscópio para detecção de esperma e óvulos. Ovos maduros em forma de pêra, 55 a 75 ?m long, e 35 a 55 ?m larga.uma quantidade significativa de ovos e espermatozóides pode ser produzida por apenas algumas ostras, mas nem todas as ostras podem desovar e é uma boa prática ter os ovos e espermatozóides de várias ostras. Por conseguinte, 20 a 30 ostras grandes são cuidadosamente limpas e lavadas, em seguida, colocadas num tanque preto raso, contendo 4 a 6 polegadas (101 a 153 mm) de água do mar filtrada e tratada com a mesma salinidade que o tanque de retenção de animais reprodutores. Depois que as ostras tiveram tempo de se aclimatar e abrir suas conchas, a água quente (geralmente 9 ° F ou 5 ° C acima do ambiente) é introduzida no tanque para induzir a desova. Ciclismo ambiente e água quente algumas vezes também pode estimular a desova. Se isso não produzir resultados em um tempo razoável (cerca de uma hora), o esperma retirado de um macho pode ser entregue por pipeta à abertura da casca de várias ostras para estimular a desova. Para evitar a fertilização indesejada, o esperma utilizado neste procedimento pode ser colocado em um forno de microondas por 20 a 40 segundos para eliminar a viabilidade. Estes espermatozóides devem ser verificados sob um microscópio para ter certeza de que não há motilidade.

óvulo fertilizado com o primeiro corpo polar.quando as ostras começam a libertar gâmetas, o esperma esbranquiçado e os ovos podem ser facilmente vistos contra o fundo negro do tanque. Os machos libertam uma corrente quase constante de esperma e as fêmeas libertam ovos durante o encerramento periódico da casca. À medida que as ostras começam a desovar, os machos e as fêmeas devem ser colocados em recipientes separados (1 galão ou 2,2 L) contendo água do mar tratada, a fim de evitar a fertilização não controlada. Quando as fêmeas parecem ter terminado a desova, devem ser retiradas dos recipientes e arejadas. Dentro de 45 minutos após a desova todos os ovos podem ser peneirados em um 50-?tela m para remover detritos. Os ovos são então combinados em um ou vários recipientes arejados e fertilizados com um pequeno volume de esperma (20 a 50 ml) combinado de três ou mais machos. Após 15 a 20 minutos, os ovos devem ser examinados ao microscópio para confirmar a fertilização. Se não mais de 10 por cento dos ovos têm um corpo polar (Fig. 8), mais esperma deve ser adicionado. Quando os ovos aparecem adequadamente fertilizados, o recipiente do ovo é trazido até um volume padrão, como 2,6 galões (10 L). (Nota: é mais simples trabalhar no sistema métrico e o sistema métrico é seguido para pequenas medidas, enquanto o sistema inglês é referido sempre que possível.) Misturar suavemente os ovos e colher uma amostra de 1 ml com uma pipeta. A amostra é colocada numa célula Sedgwick-Rafter (uma lâmina de microscópio especial que contém 1 ml de líquido) e o número de ovos fertilizados é contado. A contagem da amostra é então multiplicada pelo volume do recipiente, neste caso 10 000 ml (existem 10 000 ml em 10 L), para obter o número total de ovos fertilizados por recipiente. Este valor é usado para determinar o volume de água contendo ovos que é necessário para estocar os tanques larvares.os ovos fertilizados são armazenados em tanques de criação de larvas, geralmente de 250 galões (946 L) ou maiores, à razão de 40.000 a 80.000 por galão ou cerca de 10 a 20 ovos por ml. A fórmula seguinte pode ser utilizada para determinar o volume (ml) do recipiente de ovos necessário para armazenar os tanques de criação de larvas.:

taxa de aprovisionamento ÷ ovos por ml = ml do recipiente de ovos para adicionar para a criação de larvas de tanque

Exemplo: Se o ovo contagem na etapa anterior revelou de 10.000 ovos por ml e a taxa de lotação para um máximo de 250 litros (946-L) tanque é de 10 milhões de ovos, em seguida:

10.000.000 de ovos de lotação taxa ÷de 10.000 ovos/ml = 1.000 ml do recipiente de ovos.

algas podem ser adicionadas no mesmo dia para fornecer alimentos para o desenvolvimento rápido de larvas trochóforas e veliger.os tanques são limpos, desinfectados com hipoclorito de sódio (lixívia) e cheios de água do mar tratada antes de serem armazenados com ovos fertilizados. Os tanques devem ser cuidadosamente arejados de modo a que os ovos e as larvas subsequentes sejam misturados em todo o tanque. A partir deste ponto, até que as larvas estão prontas para definir, larvas de cuidados consiste em alimentação de algas, drenagem de tanques a cada 2 dias (diariamente como larvas perto de configuração), peneiramento e contagem de larvas, limpeza e enchimento de tanques, e repovoamento de larvas adequado de densidade. A tabela 1 descreve um esquema de drenagem, a malhagem sugerida para peneiração, a densidade larval e a densidade alimentar.

peneirar larvas de ostras.

a maioria dos ovos fertilizados desenvolvem-se em larvas trochóforas dentro de 12 a 20 horas. Estas tornam-se larvas de veliger (também chamadas larvas em forma de dobradiça ou em forma de D) em 20 a 48 horas. A primeira drenagem e peneiração (Fig. 9) é feito em cerca de 48 horas. A água é drenada lentamente através do peneiro tamanho apropriado (Quadro 1) e as larvas retidas são colocadas num volume conhecido de água do mar tratada (por exemplo, 10 L). São colhidas várias amostras de 1 ml, as larvas são contadas numa célula Sedgewick-Rafter e o número médio é utilizado para calcular o número total de larvas, tal como na contagem de ovos. As larvas são reabastecidas num tanque limpo e desinfectado, cheio de água do mar tratada com a densidade recomendada, cinco por ml ou cerca de 20 000 por galão. Este processo é repetido a cada 2 dias (diariamente como larvas próximas do local de fixação), com reduções adequadas na densidade das larvas (Quadro 1) até que as larvas estejam prontas a ser ajustadas.alimento para larvas de ostras, filtrando pequenas algas unicelulares da água. Eles devem ser fornecidos com o tamanho certo de alimentos em uma densidade que torna o alimento fácil de encontrar. Existem vários métodos para fornecer algas às larvas. O mais simples é filtrar grosseiramente (10 a 25 ?m) águas naturais para manter fora zooplâncton e grandes algas e, em seguida, fornecer a água diretamente para as larvas. Um segundo método envolve filtrar a água natural da mesma forma e, em seguida, fertilizá-la para estimular o crescimento e reprodução de algas. Depois de uma quantidade significativa de algas é produzida, é alimentada pelas ostras. Ambos os métodos têm funcionado para incubatórios, mas os resultados podem variar consideravelmente; e, a água pode ser contaminada por zooplâncton indesejado ou os tipos errados de algas.um terceiro método é a cultura separada de várias espécies de algas de culturas puras de cada espécie desejada. As espécies de algas que foram usadas para cultivar larvas de ostras incluem Chaetocerus gracilis, Isocrysis galbana, Pavlova spp., e Nannochloropsis spp. Vários estudos têm mostrado que uma mistura de espécies de algas resulta em um melhor crescimento. A cultura de algas pode ser trabalhosa, exigindo a esterilização repetida de material de vidro à medida que as algas são movidas através de uma série de recipientes maiores. Vários métodos de cultura contínua têm sido desenvolvidos que podem reduzir o trabalho e fornecer volumes maiores. Ver a secção de Leitura adicional para Fontes de informação mais detalhada sobre a cultura de algas.

dias de Cultura Larval, tamanho das larvas (eixo longo em ?m), Tamanho da peneira?m, Suggested Larval Density, and Algae Density for Larval Culture Tanks (modified from Creswell et al. 1990). O tamanho do peneiro é dado como um dos lados de uma abertura quadrada. O número em () é a abertura Diagonal.
dias após a desova altura Larval (?m) Tamanho do peneiro (?m) Larval density (larvae/ml) Algae density (cells/ml)
0 10 20-25,000
2 65 35 (50) 5 20-25,000
4 100 53 (75) 5 20-25,000
6 140 53 (75) 4-5 30-40,000
8 180 73 (103) 4 50,000
10 220 73 (103) 4 50,000
12 260 100 (141) 3 70-80,000
14 290* 118 (166) 2.5 100 a 150,000
*Veja texto para peneiramento de olhos larvas.

um quarto método é comprar algas concentradas a produtores comerciais. Embora muitas vezes caras, algas produzidas comercialmente podem ser rentáveis, dependendo do tamanho do incubatório de ostras.no entanto, é obtida, as algas devem ser adicionadas diariamente aos tanques de cultura larvar em concentrações que resultem nas densidades indicadas no quadro 1. As algas cultivadas intensivamente são muito densas e muitas vezes uma subamostra diluída deve ser contada. Para isso, uma gota de água de cultura diluída é colocada em um hemacitômetro (uma lâmina especial de microscópio com quadrados finamente gravados para auxiliar a contagem) e as células em várias áreas quadradas de 1 mm são contadas. A contagem de células é dividida pelo número de áreas quadradas de 1 mm contadas e depois multiplicada por 10 000 para obter as células por ml. Este número é então multiplicado pelo factor de diluição.o volume de água de cultura necessário para atingir a densidade desejada nos tanques larvares é determinado a partir da densidade calculada de algas. Por exemplo, se a contagem de hemacitômetro mostra 100 células em quatro áreas quadradas de 1 mm, o número de células por área quadrada de 1 mm é de 25. Multiplicar por 10 mil para obter 250 mil células por ml. Se a amostra foi originalmente diluída por um factor de 10, multiplicar por 10 para obter 2,500,000 células por ml na cultura original.a densidade desejada de algas no início da cultura larval é de 25.000 células por ml. Suponha que o tanque larval é de 250 galões (946 L). Multiplique o larvas de volume do tanque (946,000 ml) pela desejado densidade de algas (de 25.000 células/ml) e dividir pela densidade de células na cultura de algas (de 2.500.000 células/ml) para obter 9,460 ml de plâncton cultura a ser adicionado para a larva do tanque.as larvas Ajustadoras estão prontas para serem ajustadas quando tiverem uma zona ocular bem desenvolvida e 290?m ou mais de comprimento. As larvas que estão prontas para serem ajustadas são geralmente selecionadas peneirando-as através de um 180 -?m screen (254-?m abertura diagonal). As larvas que passam estão reabastecidas. As larvas retidas são peneiradas novamente num 210-?m screen (296 -?m abertura diagonal). Aqueles que passam também são reabastecidos para um tanque separado. As larvas retidas (maiores que 296 ?m) são agrupados e contados antes de serem transferidos para tanques de regulação. Este procedimento é repetido todos os dias até se obter o número desejado de larvas de olhos ou o número de larvas de olhos Diminuir ao ponto de deixar de ser eficaz continuar.as larvas de olhos grandes podem ser definidas em uma variedade de materiais (cultch) usando vários métodos. A escolha depende do uso desejado da cuspidela resultante. As duas opções básicas são a produção de ostras únicas (boas para a investigação e/ou para a criação fora do mercado de meia concha) e a produção de ostras clusters (boas para a produção de muitas ostras para projectos de restauração e/ou criação destinada ao mercado da carne descascada).pode obter-se uma única Ostra ajustando larvas em microcultch, superfícies muito lisas e escorregadias, ou por indução química. A Microcultch é geralmente feita de concha de ostra finamente moída, crivada para produzir pedaços de concha de 250 a 300?m de diâmetro. Uma larva em cada partícula. As larvas de ostra também podem ser fixadas numa superfície escorregadia e flexível, como folhas Mylar®. Depois de as larvas se metamorfosearem para cuspir, podem ser retiradas do lençol. A indução química envolve o tratamento de larvas com produtos químicos tais como epinefrina ou norepinefrina em concentrações muito baixas para induzir metamorfose sem a necessidade de um substrato.as ostras agrupadas são o resultado da fixação de larvas em grandes cultos, geralmente ostras inteiras. Isto resulta em um produto similar ao que ocorre na natureza-uma concha com muitas cuspidelas. Ao longo do tempo, o desgaste natural resulta em duas a quatro ostras adultas por casca. Quase qualquer superfície não-metálica e dura poderia funcionar como se fosse uma cultura para ostras aglomeradas. Todos os tipos de cultch devem ser limpos e “envelhecidos” na água do mar por vários dias para estabelecer um “biofilm” no cultch que irá melhorar a configuração.

Upweller/downweller.as ostras simples são produzidas através da introdução de larvas de olho (250 larvas por polegada quadrada ou 100 por cm quadrado de superfície inferior) em recipientes com fundo de malha fina (l50 – 180-?m) e uma camada fina de microcultch. Os recipientes, chamados wellers, são imersos em tanques rasos contendo água do mar tratada (Fig. 10). Os recipientes são configurados de modo a que a água possa fluir para cima (para cima) ou para baixo através (para baixo) das malhas, encaminhando a água através de uma abertura perto do topo do recipiente. (Ver a publicação n. o 4301 do SRAC para diagramas). Na armazenagem, o recipiente é definido para o abastecimento de água e todo o tanque coberto com plástico preto para incentivar um ajuste mais uniforme. As algas são adicionadas para alimentar larvas tardias e espátulas metamorfoseadas precoces. O ajuste e a metamorfose normalmente demoram 48 horas. Após a metamorfose ser confirmada, os contêineres são convertidos em upwellers utilizando filtragem grosseira (100 ?m), fluir através da água do mar.
A malha do fundo nos upsellers deve ser limpa diariamente. À medida que a espátula cresce, eles são classificados em diferentes peneiras de malhagem e a maior espátula movida para cima com telas de fundo de malha maior para aumentar o fluxo de água e crescimento. O crescimento é altamente dependente da densidade de spat, fluxo de água, e da abundância de alimentos naturais no fornecimento de água. Os alimentos podem ser complementados com algas como na alimentação das larvas.

Berçário único de ostras

a principal desvantagem para a produção única de ostras é a quantidade de trabalho necessário para manter as ostras até que elas atinjam o tamanho desejado. A cultura inicial do upweller continua até que as ostras sejam grandes o suficiente para serem colocadas no menor saco de berçário de malhagem. Estes sacos podem ser mantidos no incubatório sob alto fluxo de água ou colocados em águas naturais do fundo. A pequena malhagem dos sacos torna necessária uma limpeza regular. À medida que crescem, as ostras são peneiradas através de malhas de tamanho adequado (ligeiramente inferior à malhagem do saco em que estão a ser colocadas) e as ostras retidas são transferidas para sacos de malha maiores. Os sacos de malha maiores também exigem limpeza periódica e inspeção para predadores nos sacos. O quadro 2 apresenta um exemplo de malhagem e densidade populacional.

Ostras/saco

malhagem típica de recipientes para Ostras (sacos) e densidade animal sugerida.
malhas de saco
0.04 in (1 mm) 50,000
0.08 in (2 mm) 10,000
0.13 in (3.3 mm) 4,000
0.25 in (6.4 mm) 1,500
0.50 in (12.7 mm) 500
0.75 in (19 mm) 250

Given the labor costs of growing single oysters, it is very tempting to release single oysters onto suitable bottoms at a small size. No entanto, vários estudos demonstraram que a mortalidade de ostras pequenas e únicas é bastante elevada quando não estão protegidas em sacos ou algum tipo de contentor.a fixação em grandes cultos em conchas inteiras ou em outras seitas grandes pode ser feita colocando a seita em sacos de malha grande e os sacos em tanques com água do mar tratada. Larvas de olho são introduzidas na taxa de 100 por casca, com o objetivo de obter 10 a 30 spat por casca. Aeração suave é aplicada, algas adicionadas, e o tanque coberto. Depois de vários dias, os tanques são fornecidos com um fluxo contínuo de água do mar grosseiramente filtrada. Os sacos de cultura devem ser lavados ocasionalmente e os tanques drenados para remover os resíduos. Para reduzir os custos do incubatório, os sacos podem ser movidos após 1 a 2 semanas para águas protegidas com substrato firme e um histórico de cultivo de ostras. Quando as ostras atingem um tamanho que as protege um pouco da predação, e antes de crescerem através dos sacos, elas podem ser removidas dos sacos e espalhadas em substratos de fundo adequados.

significância

As ostras são uma componente importante da produção de frutos do mar e fornecem serviços ecológicos muito apreciados. As incubadoras de ostras podem produzir ostras para operações de cultura comercial, projetos de restauração e uma variedade de projetos de pesquisa básica e aplicada. As incubadoras de ostras têm desempenhado um papel importante na criação de ostras resistentes à doença, ostras triplóides e tetraplóides, e ostras de crescimento mais rápido.

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